“站在CRISPR肩膀上”的体内RNA编辑:精准医疗的下一个明星赛道
2023年3月27日/医麦客--星耀研究院新闻 PharmaBIGStar News/--近年来,基因编辑疗法的热度逐渐升高,入局这一领域的企业只增不减,全球首款CRISPR/Cas9基因编辑疗法,CRISPR Therapeutics和Vertex合作开发的exa-cel也将在不久后完成上市申请,更是将赛道进一步向前推进。不过,基因编辑疗法在发展路上并非一帆风顺,几家创新药企的临床管线被先后搁置,究其原因,无外乎是安全性仍需要进一步确定。
目前,企业和研究人员均在积极探索新的基因编辑方式,最初的CRISPR/Cas9基因编辑需要引入外源的编辑系统和剪切酶,需要先引发DNA双键断裂才能完成对于致病基因的修改。近年来,DNA碱基编辑器逐渐兴起,提供了一种不会导致DNA双键断裂、更安全的基因编辑方式。可是,所有的DNA编辑均可能诱发可遗传的、永久性的脱靶突变,对于患者的后续观测需要持续很长一段时间。
在这种情况下,不会改变患者基因组、又能产生正常功能性蛋白质的RNA编辑自然走入了研究人员的视野。除此之外,RNA编辑也无需进入细胞核便可完成编辑,可以在一定程度上避免DNA编辑所带来的潜在安全和伦理问题。早在1995年,Ribozyme Pharmaceuticals公司的研究人员就发现,反义寡核苷酸可以募集内源性ADAR酶(RNA腺嘌呤脱氨酶)到互补RNA链上进行碱基编辑,首次提出了“治疗性RNA编辑”这一说法,该研究结果在PNAS杂志上发表。
虽然RNA编辑具有一定的安全性优势,但RNA编辑工具的脱靶效应仍存在安全隐患,仍需拓展新型RNA编辑工具,以此开发更具特异性和安全性的RNA编辑器。近两年有关于RNA编辑的研究越来越多,总体而言,这些RNA编辑器可以分为两类,分别是:
1.基于CRISPR/Cas13系统的RNA精准编辑;
2.借助内源性ADAR酶实现的精准编辑。
本文将针对这两种编辑系统的研究进展、优势与挑战进行全面梳理分析,内容丰富,请耐心阅读,建议收藏!
CRISPR/Cas13
CRISPR/Cas9在CGT治疗领域取得了极大的成功,但一方面,DNA疗法仍存在一定的局限性;另一方面,Cas9以及Cas9依赖的基因编辑工具的专利限制了其他企业的使用。2015年,Eugene Koonin实验室和张锋团队合作,在微生物宏基因组数据库中发现了Cas13a(c2c2),Cas13b(c2c6)和Cas13c(c2c7)三种系统,并证实了其敲低RNA的能力。与靶向DNA的Cas9不同,Cas13可以在crRNA的引导下降解目标RNA,被广泛应用于RNA敲低、RNA单碱基编辑、RNA定点修饰、RNA活细胞示踪等多个领域。
➤ 2017年,张峰实验室发现Cas13a和Cas13b可在引导RNA(sgRNA)的作用下对RNA进行切割编辑,将Cas13b与ADAR2腺苷脱氨酶结构域融合,成功构建了一个RNA敲低和编辑平台,成功在哺乳动物的细胞中实现了RNA编辑。
不过,与CRISPR/Cas9类似,CRISPR/Cas13同样因为尺寸太大,无法装入AAV这一目前最成熟有效的体内基因治疗病毒载体中进行递送,难以对患者进行体内给药。因此,找到尺寸更小的Cas13酶变成了后来最主要的研究方向之一。
➤ 2018年,美国两位研究人员Patrick D Hsu和David A Scott分别在Cell和Molecular Cell上同时报道了Cas13d系统,Cas13d蛋白较常见的Cas蛋白减少了100到200个氨基酸。
➤ 2021年5月,杨辉团队在Nature Methods发表了一篇题为“Programmable RNA editing with compact CRISPR–Cas13 systems from uncultivated microbes”的研究性论文,发现了两类新的CRISPR/Cas13系统:Cas13X和Cas13Y,其中Cas13X.1蛋白比RfxCas13d蛋白小将近200个氨基酸,并且展示了与其相似的高活性和高特异性。将突变的dCas13X.1与ADAR2dd融合并进行蛋白截短改造后,研究人员开发了一种迷你型的RNA单碱基编辑工具,可以对靶RNA进行高效的A>I和C>U的编辑,这种小型编辑器可以包装到一个AAV病毒载体。
➤ 2021年8月,张锋团队再次发现了一种Cas13酶的变体,Cas13bt,其尺寸只有其它Cas13酶的一半大小,这种超小型的Cas酶可以被装进单个AAV病毒中,与张锋实验室之前开发的两个RNA编辑工具REPAIR和RESCUE结合后,可以成功修改RNA,这项Cas13研究工作已经授权给了Beam Therapeutics。
在解决了尺寸与递送问题之后,提高安全性变成了RNA编辑系统的又一问题。Cas13酶具有独特的旁系切割活性,在crRNA和目标RNA同时存在的情况下,可能会随机切割体系中其他的单链RNA(ssRNA),在应用于治疗领域时有概率引起致命的毒副作用。
➤ 2022年8月,杨辉团队在Nature Biotechnology上发表了题为“High-fidelity Cas13 variants for targeted RNA degradation with minimal collateral effects”的研究性论文,研究人员发现了一种高保真Cas13突变体(hfCas13d),显著降低了旁系切割活性。
至此,基于CRISPR/Cas13酶的RNA编辑的下一个目标,变成了提高Cas13系统在大动物上的编辑效率,降低达到有效治疗效果的最低剂量。
内源性ADAR酶
CRISPR/Cas13系统可以实现RNA的精准编辑,但仍需要借助外源性的Cas13蛋白,在这种系统中被利用的ADAR 腺苷脱氨酶本身就可以实现RNA中腺苷到肌苷(A>I)的精确编辑,肌苷被细胞的翻译机器解读为鸟苷(G),因此这也成为了主流的研究方向之一。目前,在哺乳动物中已经鉴定出了三种ADAR蛋白:ADAR1(isoform p110和p150)、ADAR2和ADAR3。
ADARs介导的RNA编辑依赖于两种成分,即向导RNA(adRNA/gRNA)和ADAR蛋白,gRNA负责将ADAR招募到目标RNA序列处并且完成编辑。传统的gRNA利用细胞中的天然ADAR方面效率不高,内源性ADAR表达量相对较少,需要依赖外源性ADAR酶及其变体来提高效率,而ADAR的过度表达又会引入过多的非靶向编辑,还可能导致蛋白质相互作用的改变,进一步影响细胞生理学。
因此,这种技术路线的主要研发领域之一,就是研发改造新的gRNA。
➤ 2019年,北京大学魏文胜课题组研发出了借助gRNA募集ADAR实现RNA精准编辑的新策略:LEAPER™。LEAPER™通过在细胞中表达短工程化的ADAR募集RNA(ADAR-recruiting RNA,arRNA)来完成ADAR的招募以及RNA编辑,不过这种技术彼时尚不成熟,具有一定长度的arRNA可能引起邻近的碱基的脱靶编辑。
➤ 2022年1月,德国图宾根大学的研究人员对gRNA进行了优化改造,并且开发出同样利用ADAR、无需外源蛋白的新策略--CLUSTER。LEAPER和CLUSTER两种策略拥有相近的RNA精准编辑效率,不过,CLUSTER策略在邻近位点的脱靶率上具有一定的优势,没表现出明显的邻近碱基脱靶。
➤ 2022年2月,魏文胜教授实验室在Nature子刊发文,题为“Engineered circular ADAR-recruiting RNAs increase the efficiency and fidelity of RNA editing in vitro and in vivo”,报道了LEAPER™的升级版本——LEAPER™ 2.0,设计并运用了可招募ADAR的环形RNA(circular ARAR-recruiting RNA,circ-arRNA),通过AAV递送,遗传编码的circ-arRNA可以在人的原代细胞和类器官中实现长时程的RNA编辑,这种可避免核酸外切酶切割的环状RNA进一步提升了体外和体内编辑的效率和精准性,基本清除了双链RNA区域内目标转录本上的脱靶。
➤ 2022年6月,美国加州大学Prashant Mali团队在Nature Biotechnology上发文,研究人员设计了一种高度稳定的环状向导RNA(cadRNA),经体外验证编辑效率后,通过AAV8递送单拷贝和双拷贝cadRNA,实现了招募内源性ADAR,并且进一步完成了体内RNA编辑。
➤ 2023年3月11日,Nature子刊发表了一篇题为“Autocatalytic base editing for RNA-responsive translational control”的文章,介绍了一种名为DART VADAR的传感器,通过与RNA编辑器相结合,经正反馈回路放大了内源性ADAR编辑信号,小于5kb的大小(包括启动子和终止子)便可以触发自催化,扩大了RNA编辑的应用空间。
小结
基因编辑本身作为一种新技术,在走向商业化的途中日趋完善,也将覆盖多种此前缺乏有效治疗手段的疾病。RNA编辑这一细分的基因编辑治疗领域仍处在相对早期的探索阶段,其临床前研究和研究性论文的数量在近两年不断涌现,似乎在从0到1的增长后出现了一点爆发式增长的征兆,礼来等巨头也不惜投入巨额资金在这一领域内布局。或许,这种更安全、更稳定的基因编辑方式将成为精准医学的下一个热门赛道之一,在现有的“巨人”——CRISPR技术的基础上,进一步将基因编辑疗法推向更多疾病治疗领域。
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